Связывание субстрата в митохондриальном носителе АДФ/АТФ является этапом

Новости

ДомДом / Новости / Связывание субстрата в митохондриальном носителе АДФ/АТФ является этапом

Aug 11, 2023

Связывание субстрата в митохондриальном носителе АДФ/АТФ является этапом

Том «Природные коммуникации»

Nature Communications, том 13, номер статьи: 3585 (2022) Цитировать эту статью

3325 Доступов

5 цитат

27 Альтметрика

Подробности о метриках

Митохондриальные носители АДФ/АТФ импортируют АДФ в митохондриальный матрикс и экспортируют АТФ в цитозоль, чтобы питать клеточные процессы. Структуры ингибированного состояния цитоплазмы и открытого матрикса подтвердили механизм альтернативного доступа, но молекулярные детали связывания субстрата остаются нерешенными. Здесь мы оцениваем роль подвергающихся воздействию растворителя остатков пути транслокации в процессе связывания субстрата. Мы идентифицируем основной сайт связывания, состоящий из трех положительно заряженных и набора алифатических и ароматических остатков, которые связывают АДФ и АТФ в обоих состояниях. Кроме того, на противоположных сторонах этого сайта имеются две пары остатков аспарагина/аргинина, которые участвуют в связывании субстрата в зависимости от состояния. Таким образом, субстраты проходят серию поз связывания, вызывая конформационные изменения носителя, которые приводят к их транслокации. Свойства этого сайта объясняют электрогенный и обратимый характер транспорта адениннуклеотидов.

Жизнеспособность и функция эукариотических клеток зависят от транспорта метаболитов и ионов через непроницаемую внутреннюю мембрану митохондрий, чтобы поддерживать метаболические пути митохондрий и цитозоля и обеспечивать соединения для поддержания органелл и клеток. Большинство этих соединений переносится семейством митохондриальных переносчиков (SLC25), которое является крупнейшим семейством переносчиков растворенных веществ у людей1,2,3. Митохондриальный носитель АДФ/АТФ, также называемый адениннуклеотид-транслоказой, выполняет один из наиболее активных этапов транспорта в организме человека. Переносчик импортирует цитозольный АДФ в митохондриальный матрикс для преобразования в АТФ с помощью АТФ-синтазы и экспортирует АТФ в межмембранное пространство, которое сливается с цитоплазмой, для питания энергозатратных процессов клетки, как неотъемлемая часть окислительное фосфорилирование4. Переносчик циклически переключается между двумя состояниями, которые традиционно называются состоянием открытого матрикса и открытым состоянием цитоплазмы, из-за ориентации сайта связывания субстрата по отношению к этим компартментам5,6. Функциональным и структурным исследованиям способствовала доступность ингибиторов, специфичных для состояния. Носитель блокируется в открытом цитоплазматическом состоянии атрактилозидом (ATR)7 и карбоксиатрактилозидом (CATR)8,9, тогда как в открытом матриксном состоянии он блокируется бонгкрекиковой кислотой (BKA)10,11,12. Оба состояния, связанные с ингибитором, являются абортивными, поскольку ингибирование достигается за счет предотвращения связывания субстрата и захвата носителя в структурную конформацию, которая не является частью транспортного цикла5,6.

Как и большинство членов SLC25, носитель ADP/ATP состоит из трех повторов гомологичной последовательности, состоящих примерно из 100 аминокислот каждый13, которые сворачиваются в тройную псевдосимметричную структуру с центральным путем транслокации субстратов14. Атомная структура бычьего носителя АДФ/АТФ в CATR-связанном цитоплазматическом открытом состоянии показала, что каждый повтор последовательности кодирует домен, состоящий из трансмембранной α-спирали с нечетным номером (H1, H3, H5), петли, содержащей короткую спираль (h12, h34, h56), идущая параллельно мембране со стороны матрикса, и трансмембранная α-спираль с четным номером (H2, H4, H6)15 (дополнительный рисунок 1). Эта базовая топология была подтверждена атомными структурами грибных переносчиков ADP/ATP, заблокированными в связанном с CATR цитоплазматическом открытом состоянии16 и в открытом матриксном состоянии, связанном с BKA17.

В каждом из трех доменов спираль с нечетным номером, матричная спираль и N-концевая часть спирали с четным номером до «точки контакта»17,18,19 составляют основной элемент, тогда как С-концевой элемент часть спирали с четным номером образует затворный элемент17 (дополнительный рисунок 1). Взаимное преобразование между двумя состояниями происходит поочередно20 и включает в себя обширные движения шести структурных элементов, что делает переносчик АДФ/АТФ наиболее динамичным переносчиком растворенных веществ, известным на сегодняшний день5,17. Три воротных элемента поочередно открывают и закрывают цитоплазматическую сторону носителя, а три основных элемента поочередно закрывают и открывают матриксную сторону. Открытие и закрытие регулируются разрушением и образованием двух сетей и скобок солевых мостиков: матричной сети солевых мостиков мотива [PS]x[DE]xx[KR]15,16 и глютаминовой скобки16 на основных элементах и ​​цитоплазматической сеть солевых мостиков мотива [FY][DE]xx[RK]17,20,21 и тирозиновые скобки17 на воротных элементах (дополнительный рисунок 1). Скоординированное движение этих шести структурных элементов обусловлено связыванием и высвобождением субстрата как единственного прямого источника поступления энергии22,23.

 0.05, ns; p ≤ 0.05, *; p ≤ 0.01, **; p ≤ 0.001, ***; p ≤ 0.0001, ****). Colours represent the three observed growth properties: growth not affected significantly (ns), light blue; growth significantly affected (0.5 ≥ p > 0.0001), marine; no growth (p ≤ 0.0001), dark blue. b Position of the analysed residues in the matrix-open BKA-bound TtAac structure (PDB code: 6gci chain A), shown as a cartoon representation. Spheres represent the CA carbon atoms and are colour-coded as described in a. Source data for this figure are provided as a Source Data file./p> 0.01, ns; p ≤ 0.01, *; p ≤ 0.001, **; p ≤ 0.0001, ***; p ≤ 0.00001, ****). b Lateral view of ScAac2 cytoplasmic-open state structure in complex with CATR (PDB code: 4c9h chain A). The interacting residues of ScAac2 are conserved in TtAac, with the exception of K104 which is R100 in TtAac and the two proteins share 74% sequence identity. To facilitate comparison, we used the TtAac labelling (Supplementary Fig. 3). Residues that form ionic interactions (yellow dashes) and hydrophobic contacts with CATR (marine) are shown in dark blue and brown, respectively. Residue K104 of ScAac2 has been modelled to Arg (R100) for TtAac. c Matrix view of the matrix-open structure of TtAac with BKA bound (PDB code: 6gci chain A). Residues that form ionic interactions (yellow dashes) or hydrogen bonds (black dashes) with BKA (orange) are shown in purple, while residues that form hydrophobic contacts are shown in cyan. Source data for this figure are provided as a Source Data file./p>