Кандидат-переносчик, позволяющий симбиотическим динофлагеллятам кормить своих коралловых хозяев.

Новости

ДомДом / Новости / Кандидат-переносчик, позволяющий симбиотическим динофлагеллятам кормить своих коралловых хозяев.

Jan 04, 2024

Кандидат-переносчик, позволяющий симбиотическим динофлагеллятам кормить своих коралловых хозяев.

ISME Communications, том 3,

ISME Communications, том 3, номер статьи: 7 (2023 г.) Цитировать эту статью

2293 Доступа

24 Альтметрика

Подробности о метриках

Симбиотическое партнерство между кораллами и динофлагеллятными водорослями имеет решающее значение для коралловых рифов. Кораллы обеспечивают своим водорослевым симбионтам убежище, углекислый газ и азот. Взамен симбиотические водоросли снабжают своих животных-хозяев фиксированным углеродом в форме глюкозы. Но как глюкоза передается от водорослевого симбионта к животному-хозяину, неизвестно. Мы пришли к выводу, что транспортер, находящийся в клеточной мембране динофлагеллят, будет способствовать переносу глюкозы наружу в окружающую ткань животного-хозяина. Мы идентифицировали потенциального переносчика у книдарий-симбионта динофлагелляты Breviolum minutum, который принадлежит к повсеместному семейству вспомогательных унипортеров сахара, известных как SWEET (сахара в конечном итоге станут экспортируемыми переносчиками). Предыдущие анализы экспрессии генов показали, что BmSWEET1 активируется, когда водоросли живут в симбиозе с книдарийным хозяином, по сравнению со свободноживущим состоянием [1, 2]. Мы использовали иммунофлуоресцентную микроскопию для локализации BmSWEET1 в клеточной мембране динофлагеллят. Анализы предпочтения субстратов в дрожжевой суррогатной транспортной системе показали, что BmSWEET1 транспортирует глюкозу. Количественная микроскопия показала, что симбиотические клетки B. minutum содержат значительно больше белка BmSWEET1, чем свободноживущие клетки того же штамма, что соответствует экспорту во время симбиоза, но не во время свободноживущей планктонной фазы. Таким образом, BmSWEET1 находится в нужном месте, в нужное время и имеет правильный субстрат, который станет транспортером, с помощью которого симбиотические динофлагеллятные водоросли кормят своих животных-хозяев для питания коралловых рифов.

Симбиоз — это мощная эволюционная стратегия, которая объединяет наборы навыков отдельных видов для решения задач экологического отбора в качестве консорциума. В случае с коралловыми рифами партнерство обеспечивает обильный рост в бедных питательными веществами водах, которые в противном случае поддерживали бы очень мало биомассы [3]. Симбиозы коралловых рифов чрезвычайно успешны. Хотя рифы занимают лишь 0,1% морской среды, они поддерживают более 33% морского разнообразия [4].

Симбиотические водоросли кораллов используют CO2 и энергию света для производства сахаров посредством фотосинтеза. Сахар подается кораллам, и этот симбиотический «перенос валюты» [5] лежит в основе способности большинства кораллов откладывать карбонат кальция и, таким образом, строить рифы [3]. В свою очередь, коралл-хозяин обеспечивает своим водорослевым симбионтам убежище, CO2 и драгоценный азот. Передача фотосинтетически закрепленного углерода от симбионта к хозяину была продемонстрирована более 60 лет назад Мускатином и Хэндом [6], а симбионты обеспечивают до 90% энергии, используемой кораллом [3]. Ранние работы, в которых использовались симбионты, удаленные от хозяина, показали, что основным экспортным товаром является глицерин [7]. Однако недавние исследования с использованием интактных партнерств показывают, что глюкоза является основным экспортным продуктом, и предполагают, что высвобождение глицерина симбионтами является либо артефактом, вызванным их изоляцией от хозяина [8,9,10], либо, возможно, транспортируется в вакуоль симбиосомы в виде осмолита [8,9,10]. 11]. Таким образом, мы знаем, какая форма фотосинтата переносится и в каком объеме происходит перенос, но мы практически ничего не знаем о том, как происходит перенос.

Переносимый фотосинтат должен пересечь как минимум две мембраны: мембрану клетки водоросли; и так называемая симбиосома, вакуольподобная мембрана, создаваемая во время фагоцитотического поглощения симбионта хозяином [12]. Учитывая, что глюкоза непроницаема для мембран, вероятно, в одной или обеих мембранах имеются транспортеры, перемещающие глюкозу наружу. Мы предполагаем, что по крайней мере один транспортер будет находиться в клеточной мембране симбионта и будет преимущественно активен у госпиталя. Для идентификации переносчика(ов) мы ранее сравнивали экспрессию генов в свободноживущих и симбиотических клетках Breviolum minutum [1], динофлагеллятного симбионта кораллов и анемонов [13]. Несколько транспортеров показали повышенную экспрессию в госпитале [1], а один, который мы называем BmSWEET1, дополнительно охарактеризован здесь.

100 cells (n) and depicted as box/whisker plots. G Fluorescence intensity in the free-living cells. H Fluorescence intensity of the in hospite cells. I, J Background fluorescence intensity was quantified in equivalent numbers of cells prepared similarly but without the primary antiserum and is marginally less than was measured for free-living cells labelled with the primary antibody (compare G)./p>100 cells were quantified for each treatment (Fig. 4G–J). Baseline/background labelling was established by omitting the primary BmSWEET1 antiserum (Fig. 4I, J). Quantitation shows that the algae have significantly more BmSWEET1 protein in hospite (Fig. 4H) than they do whilst free-living (Fig. 4G). To control for differential accessibility of antibodies to the free-living cells versus the freshly isolated symbiotic cells, we measured cell wall thicknesses, which showed that the median wall thickness did not differ in the two groups (Fig. S2). The symbiotic dinoflagellates exist at lower light intensity (15 μmol m−2 s−1 photons) than their free living, in vitro cultured counterparts (60 μmol m−2 s−1 photons, see Materials & Methods). To control that light intensity was not affecting the amount of BmSWEET1 protein, we performed immunofluorescence on two cultures: one grown at 60 μmol m−2 s−1 photons, and another at 15 μmol m−2 s−1 photons. No significant difference in BmSWEET1 immunofluorescence labelling was observed at different light intensities in vitro (Fig. S3)./p>